二氯化钴诱导A549细胞凋亡及机制的研究

2012-12-07 09:03毕艳丽徐麟皓沈香娣
医学研究杂志 2012年3期
关键词:抑制率培养液诱导

陈 健 仇 容 毕艳丽 徐麟皓 沈香娣

缺氧是实体肿瘤的主要生长特性之一,与肿瘤的凋亡抑制、放化疗耐受、血管生成和侵袭转移等关系密切[1]。也有研究表明缺氧可以通过抑制线粒体呼吸链、降低线粒体膜电位,增加活性氧的生成以及通过JNK/SAPK等信号途径诱导凋亡[2]。本实验从缺氧对人非小细胞肺癌A549体外毒性试验,并对细胞传导通路的相关分子进行研究,探讨缺氧诱导肺癌细胞凋亡的分子机制。

材料与方法

1.细胞来源和培养:人非小细胞肺癌A549细胞购自南京凯基生物科技发展有限公司。细胞置于37℃、5%CO2、饱和湿度的细胞培养箱培养,培养液为含有10%小牛血清的RPMI1640,每2~3天传代1次,取对数生长期的细胞进行实验。

2.药物和试剂:二氯化钴(CoCl2)购自美国 Sigma公司;RPMI1640培养液购自杭州吉诺生物医药技术有限公司;小牛血清购自杭州四季青生物制品公司;MTT、DMSO均为美国MBI公司产品;荧光染色试剂盒购自南京凯基生物科技发展有限公司;一抗(survivin、Akt和p-Akt抗体购自美国CST公司;β-actin购自美国 Santa Cruz公司),二抗(survivin、Akt、p-Akt和β-actin均购自美国Pierce公司)。

3.MTT法检测细胞生长抑制率:用培养液稀释配成不同浓度 CoCl2(100、200、300、400μmol/L)。以约 2.0 ×104个/孔细胞接种于96孔培养板中,待细胞贴壁后弃去旧培养液,分别加入不同浓度CoCl2,每个浓度每个时间点均设6个平行孔,并设细胞对照组,细胞对照组加入无血清培养液,培养24、36和48h。采用MTT法检测,弃去培养液,加入5g/L的MTT溶液20微升/孔,继续培养4h,然后吸弃上清液,加150微升/孔DMSO,振荡10min后用酶标仪测每孔A490nm值,计算细胞生长抑制率(IR)。细胞生长抑制率=[1-(A药物处理组/A细胞对照组)]×100%。实验重复3次,取平均值。

4.AO/EB荧光染色法检测细胞凋亡:以约1.0×106个/孔细胞接种于6孔培养板中,待贴壁后弃去旧培养液,分别加入不同浓度的CoCl2(200、300、400μmol/L),并设细胞对照组,培养24、48h,用PBS洗涤并配成5.0×105个/ml细胞悬液,将25μl细胞悬液和染色反应液混合,吸取10μl混合液置于一载玻片,并用盖玻片盖上,在荧光显微镜510nm激发波长下观察细胞。计数500个细胞,计算细胞凋亡率。细胞凋亡率=[(凋亡早期细胞+凋亡晚期细胞)/细胞总数]×100%。实验重复3次,取平均值。

5.Western blotting检测蛋白表达:实验组分别用不同浓度(200、300、400μmol/L)CoCl2培养 24h 及 300μmol/L CoCl2作用24、36、48h,并设细胞对照组,收集各组细胞。PBS洗涤2次,加入蛋白裂解液,置冰上30~60min。12000r/min离心15min,取上清液,采用BCA法进行总蛋白定量,然后上样,电泳,转膜,封闭,加一抗,4℃孵育过夜,TBS-T洗膜3次,二抗孵育2h,洗膜3次,加入ECL,暗盒中曝光后进行显影和定影。应用凝胶扫描仪对胶片进行光密度扫描,并以β-actin校正做相对量分析,数值以两者积分光密度的比值表示。实验重复3次,取平均值。

结 果

1.细胞增殖的检测结果:300、400μmol/L CoCl2作用24、36、48h后A549细胞的生长受到不同程度的抑制,与对照组比较有显著差异(p<0.01),并呈比较明显的剂量和时间依赖关系,400μmol/L 48h后细胞抑制率可达79.03%(表1)。

表1 不同浓度CoCl2作用不同时间对细胞生长的影响,n=3)

与对照组比较,*P <0.01,**P <0.001

组别 24h A490值 IR(%) 36h A490值 IR(%) 48h A490值 IR(%)0.62 ±0.03 - 0.60 ±0.03 - 0.62 ±0.06 -2(100μmol/L) 0.73 ±0.07 -17.74 0.76 ±0.05 -26.67 0.56 ±0.05 9.68 3(200μmol/L) 0.61 ±0.04 1.61 0.55 ±0.09 8.33 0.42 ±0.02* 32.26 4(300μmol/L) 0.38 ±0.01** 38.71 0.38 ±0.01* 36.67 0.32 ±0.06** 48.39 5(400μmol/L) 0.31 ±0.02** 50.00 0.22 ±0.06** 63.33 0.13 ±0.05**1(对照组)79.03

2.凋亡细胞的检测结果:通过荧光显微镜下观察到凋亡早期细胞形状不规则,如呈新月形,核质体呈绿色;凋亡晚期细胞大小不一,可见胞质芽状突起,核质体呈橙色,染色质浓缩,见图 1。200、300、400μmol/L CoCl2处理24、48h后的细胞凋亡率均显著高于对照组(p<0.01)(表2)。

表2 不同浓度CoCl2作用不同时间对细胞凋亡的影响(n=3

表2 不同浓度CoCl2作用不同时间对细胞凋亡的影响(n=3

与对照组比较,*P <0.01,**P <0.001

组别 组别(μmol/L)细胞凋亡率(%)(24h)细胞凋亡率(%)(48h)2.23 ±0.41 2.55 ±0.48 CoCl2 组 200 9.34 ±0.87* 12.13 ±1.61**300 12.93 ±1.50** 21.25 ±3.52**400 19.17 ±2.93** 26.09 ±1.80对照组 -**

3.total-Akt、p-Akt及 survivin 蛋白表达的检测结果:300、400μmol/L CoCl2作用 48h 后 p -Akt、survivin蛋白表达量较对照组显著减少(p<0.01),300μmol/L CoCl2作用36、48h较对照组能显著下调p-Akt、survivin蛋白表达量(P <0.01),而 total-Akt蛋白表达量均无显著变化。结果见图2、图3,表3、表4。

图2 不同浓度CoCl2作用48h后total-Akt、p-Akt及survivin蛋白表达

表3 不同浓度CoCl2作用48h后total-Akt、p-Akt及survivin蛋白表达(n=3)

表3 不同浓度CoCl2作用48h后total-Akt、p-Akt及survivin蛋白表达(n=3)

与对照组比较,*P <0.01,**P <0.001

- 0.20 ±0.01 0.39 ±0.03 0.46 ±0.03 CoCl2 组 200 0.22 ±0.02 0.38 ±0.02 0.40 ±0.02 300 0.20 ±0.03 0.28 ±0.01* 0.30 ±0.03**400 0.19 ±0.02 0.14 ±0.03**0.11 ±0.03 total-Akt p-Akt survivin对照组组别(μmol/L)**

图3 400μmol/L CoCl2作用不同时间后total-Akt、p-Akt及survivin蛋白表达

表4 400μmol/L CoCl2作用不同时间后total-Akt、p-Akt及survivin蛋白表达(n=3

表4 400μmol/L CoCl2作用不同时间后total-Akt、p-Akt及survivin蛋白表达(n=3

与对照组比较,*P <0.01,**P <0.001

- 0.21 ±0.03 0.37 ±0.04 0.38 ±0.03 CoCl2 组 24h 0.22 ±0.05 0.26 ±0.02* 0.34 ±0.03 36h 0.20 ±0.02 0.20 ±0.03** 0.22 ±0.02**48h 0.17 ±0.04 0.15 ±0.02** 0.15 ±0.02 Total-Akt p-Akt survivin对照组分组**

讨 论

正常氧供给条件下,钴通过细胞内离子置换使亚铁螯合酶失活,抑制细胞氧化反应,从而达到常氧下模拟细胞缺氧的目的。我们采用CoCl2处理A549细胞,模拟体外细胞化学性缺氧进行实验。应用MTT法和细胞形态学检测证实CoCl2对A549细胞具有明显的毒性作用,且呈剂量-时间依赖性地增加细胞生长抑制率并诱导其凋亡,400μmol/L作用48h细胞生长抑制率高达79%,细胞凋亡率高达26%。

AKT是一种丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶,它处在多条信号通路的重要交叉点,在细胞的存活和介导肿瘤的发生中有重要作用,并且已经成为肿瘤治疗的新靶点之一[3]。p-Akt是AKT的功能活化状态,在大部分肿瘤中高表达,其活化过程可分为PI3K依赖和非PI3K依赖两种。磷脂酰肌醇-3激酶(PI3K)是细胞内磷脂的关键调节剂,Akt处在PI3K/Akt信号通路的中心环节,是PI3K下游的直接靶蛋白,Akt催化结构域的Thr308及Ser473位点的磷酸化而被激活,成为p-Akt[4],只有 p-AKT 才具有生物学特性。本实验Western blotting法检测了CoCl2处理前后的Akt、p-Akt蛋白表达变化,结果显示p-AkT蛋白表达量比对照组下降,统计学有显著性差异,且呈剂量-时间依赖性,而总AKT蛋白改变无显著性差异,说明p-AkT是细胞内早反应事件,证实该信号通路被化学性缺氧阻断。p-AkT抑制细胞凋亡与其能够磷酸化激活下游一系列分子如Bcl-2家族、Foxo家族、lAPs家族、半胱氨酸蛋白酶(caspase)-3、caspase-9、Bad、NF - κB 等成员有关,保护细胞不发生凋亡[5~8]。

经典的凋亡通路有死亡受体通路和线粒体通路,最后都激活天冬氨酸特异性caspase家族导致凋亡的发生,而凋亡抑制蛋白(IAPs)家族起抑制凋亡的作用[9]。survivin是IAPs家族的一个新成员,是目前发现最强的凋亡抑制因子。研究证实,它在肺癌组织中表达高达90%,并且是非小细胞肺癌最显著的预后影响因子之一[10]。survivin的高表达可抑制 Fas、Bax、caspase以及抗肿瘤药物等多种因素所诱导的细胞凋亡。本实验检测结果显示,CoCl2处理后的survivin蛋白表达水平显著下降,并呈剂量-时间依赖性,促进细胞凋亡的发生。而且本研究也探讨了p-Akt和survivin的关系,结果表明p-Akt和 survivin表达呈正相关,提示在A549细胞中survivin的高表达可能与Akt的活化有关。Fornaro等在前列腺癌细胞及CD34+的脐血细胞中也证实了存在Akt/survivin通路。

基于以上实验结果可证实,CoCl2诱导A549细胞凋亡与阻断Akt信号转导通路,下调survivin表达发病机制占有重要地位,但细胞凋亡过程是多系统、多因素参与的复杂过程,是否还有其他机制的参与,具体的机制尚有待进一步实验研究证实。

1 Hoeckel M,Schlenger K,Hoeckel S,et al.Hypoxia cervical cancers with low apoptotic index are highly aggressive[J].Cancer Res,2001,59(18):4525-4528

2 Kunz M,Ibrahim S,Koczan D,et al.Activation of c- Jun NH2 - terminal kinase/stress-activated protein kinase(JNK/SAPK)is critical for hypoxia - induced apoptosis of human malignant melanoma[J].Cell Growth Differ,2001,12(3):137 -145

3 Dahl C,Guldberg P.The genome and epigenome of malignant melanoma[J].APMIS,2007,115(10):1161 - 1176

4 Viniegra J,Martfnez N,Modirassari P,et al.Full activation of PKB/Akt in response to insulin or ionizing radiation is mediated through ATM[J].Biol Chem,2005,280:4029 -4036

5 Fayard E,Gill J,Paolino M,et al.Deletion of PKB alpha/Akt1 affects thymic development[J].PLoSOne,2007,2(10):992

6 Matter M,Ruoslahti E.A signaling pathway from the alpha5betal and alpha(v)beta3 integrins that elevates Bcl-2 transcription[J].J Biol Chem,2001,276(30):27757 -27763

7 王东海,王建祥.PI3K/Akt信号通路异常与白血病[J].国际输血及血液学杂志,2006,29(1):12 -24

8 苗丽君,王静.AKT与肿瘤的研究进展[J].国外医学生理、病理科学与临床分册,2004,24(5):406 -409

9 Gu K,Ke A.Transforming growth factor beta can be a parameter of aggressiveness of pT1 colorectal cancer[J].World J Gastroenterol,2005,11(8):1193

10 Singhal S,Vachani A,Antin - Ozerkis D,et al.Prognostic implications of cellcycle,apoptosis,and angiogenesis biomarkers in non - small cell lung cancer:a review[J].Clin Cancer Res,2005,11(11):3974 -3986

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