熊建飞,周光明,何 强,许 丽,张 磊,吴利敏
(1.西南大学化学化工学院,发光与实时分析教育部重点实验室,重庆400715;2.重庆大学三峡库区生态环境教育部重点实验室,重庆400045)
离子色谱法测定玄参中的单糖和低聚寡糖
熊建飞1,周光明1,何 强2,*,许 丽1,张 磊1,吴利敏1
(1.西南大学化学化工学院,发光与实时分析教育部重点实验室,重庆400715;2.重庆大学三峡库区生态环境教育部重点实验室,重庆400045)
建立阴离子交换色谱-脉冲安培检测法测定玄参中的葡萄糖、蔗糖、果糖和水苏糖的方法。以METROSEP CARB 1(150mm×4.0mm)阴离子交换柱为分离柱,脉冲安培检测,30mmol/L NaOH溶液为淋洗液等度洗脱,超声水提法提取玄参中的糖。峰面积的相对标准偏差为0.56%~9.01%,线性范围1~50mg/L,检出限为0.0452~0.0921mg/L,相关系数R为0.9931~0.9998,加标回收率在96.52%~109.56%之间。该方法预处理简单,准确度高,适用于快速测定玄参中的单糖和低聚寡糖。
阴离子交换,脉冲安培,等度洗脱,超声水提,玄参,单糖,低聚寡糖
玄参为玄参科,玄参属植物的干燥根,具有凉血滋阴、泻火解毒的功效。玄参中含有多种成分,如有机酸类、黄酮类、环烯醚萜类、甾醇、挥发油、糖类等[1]。玄参中的糖类主要为单糖和低聚寡糖,胡礼勇等人[2]从玄参中分离得到一种四糖,并经核磁共振谱图分析鉴定为水苏糖。水苏糖是天然存在的一种四糖,具有多种生理功能:能够促进体内有益菌增殖,改善消化道内环境;调节免疫、降血糖、降血脂,促进肠道对钙、镁等微量元素的吸收[3];在防癌、抗癌、抗衰老等方面也有重要作用。目前,关于中草药的化学成分研究大多集中在酮类、苷类、萜类、有机酸、甾醇、脂类等[4-7],而糖类化合物的研究大多数是多糖类物质[8],单糖和低聚寡糖的研究相对较少,因此测定玄参中单糖和低聚寡糖,尤其是水苏糖的含量,可为进一步开发利用玄参提供参考依据。测定糖的方法主要有毛细管电泳色谱法[9]、气相色谱法[10]、高效液相色谱法[11]等,它们大多有需要衍生化处理或灵敏度低等缺陷。离子色谱法测定糖,样品前处理简单,无需衍生,且灵敏度高。糖能够在碱性环境中解离成阴离子,能够用阴离子交换柱进行分离,在pH≥12的环境中糖能够在电极上发生氧化还原反应,可以用脉冲安培检测器检测。离子色谱法测定的糖一般是单糖和二糖,而四糖的测定则较为少见。四糖的保留能力较强,往往需要在淋洗液中添加NaAc来减弱它的保留能力,有时还需要梯度洗脱[12],从而增加了实验的复杂程度;而等度洗脱法避免了这些复杂的步骤,简化了测定过程。
葡萄糖(分析纯)、蔗糖、果糖(生化试剂) 成都市科龙化工有限公司;水苏糖 分析纯,Sigma公司;NaOH 分析纯,重庆川东化工有限公司;玄参 购于本地中药房;超纯水。
(Metrohm)861 Advanced Compact IC、METROSEP CARB 1(150mm×4.0mm)阴离子交换柱、脉冲安培检测器、IC-Net 2.3色谱工作站 瑞士万通公司;电子天平 上海精天电子仪器有限公司;隔膜真空泵 天津市腾达过滤器件厂;超声波清洗器 上海必能信超声波有限公司;布氏漏斗,0.45μm微孔滤膜。
METROSEP CARB 1(150mm×4.0mm)阴离子交换柱,脉冲安培检测,淋洗液30mmol/L NaOH溶液,柱温32℃,流速1.0mL/min,再生液200mmol/L NaOH溶液,加标定性,外标法峰面积定量。
1.3.1 标准溶液的配制 分别精密称取葡萄糖、蔗糖、果糖0.1000g,放入100mL容量瓶中,加入20mL去离子水,搅拌溶解置入100mL容量瓶中定容至刻度,配成1000mg/L作为储备液;称取水苏糖0.0050g,放入100mL容量瓶中,配成50mg/L作为储备液。
1.3.2 淋洗液的配制 准确称取8.0g NaOH固体于100mL容量瓶中溶解,转入1000mL容量瓶中定容,配成200mg/L的NaOH溶液作为再生液。同样的方法称取1.2g NaOH固体溶解后,转入1000mL容量瓶中定容,配制成30mg/L的NaOH溶液作为淋洗液。
中草药的化学成分较为复杂,常规方法难以达到理想的提取效果,近年来发展起来的超声波提取技术是一种较为理想的提取方法。超声波能够破坏细胞结构,使其在瞬间破裂,使有效成分得以释放,提高了提取效率[13]。糖类化合物具有较好的水溶性,可以用水作提取溶剂,因此本实验采用超声水提法提取玄参中的糖。
将玄参切碎,称取0.1g,放入100mL小烧杯中,加入20mL去离子水,室温超声10min,用布氏漏斗过滤,将滤液定容至100mL,0.45μm微膜滤纸过滤,取滤液10mL于100mL容量瓶中定容,进样。
实验分别考察了5、10、15、20、25、30、35、40、50mmol/L NaOH溶液对分离度的影响,结果表明当NaOH溶液的浓度低于20mmol/L时,峰的分离度较差,随着淋洗液浓度的增大,峰形逐渐变好,当浓度为30mmol/L时,各个峰分离度较好,大于30mmol/L时果糖与水苏糖分离度变差。因此本实验选择30mmol/L NaOH溶液为淋洗液。
分别设定柱温为20、25、30、32、40℃,实验结果表明,降低温度峰的分离度稍有改变,峰形较好,但柱压逐渐增大,随着温度的升高分离度变差,综合考虑选择柱温为32℃。
分别设定流速为0.5、0.8、1.0、1.2、1.6mL/min,实验结果表明,改变流速对分离度的影响很小,随着流速的增大保留时间缩短,但柱压升高,为了保护色谱柱和缩短分离时间,选择1.0mL/min为流速。
在以上优化好的条件下,测得10mg/L混合标准溶液的谱图,横坐标为保留时间(min),纵坐标为峰高(nA),如图1所示。
图1 4种糖的标准色谱图Fig.1 Standards chromatography of 4 kinds of monosaccharides
将10mg/L的标准溶液连续5次进样,分别计算峰高、峰面积的相对标准偏差(RSD)。计算结果如表1所示,由表1可知保留时间和峰高的相对标准偏差较大,而峰面积的相对标准偏差较小,因此本实验采用加标定性法进行定性分析,采用外标法对峰面积定量。
表1 相对标准偏差RSD测定结果(%)Table 1 The results of relative standard deviation(%)
图2 提取率与超声时间的关系Fig.2 Effect of ultrasonoscope on extraction rate
表2 线性方程、线性范围和仪器检出限Table 2 Linear regression equations,linear ranges and detection limits
称取0.1g样品6份,按1.4中样品处理方法进行样品前处理,分别超声5、10、15、20、25、30min。超声时间对糖提取效率的影响如图2、图3所示,横坐标为超声提取时间(min),纵坐标为提取率(质量分数%)。由图2、图3可知,提取时间对葡萄糖、蔗糖、果糖提取率的影响较大,对水苏糖影响较小,随着超声时间的延长,水苏糖的提取率略有下降。实验发现,超声时间越长,溶液杂质越多,使得过滤时间延长,因此本实验选择超声时间为10min。
分别配制1、3、5、10、30、50mg/L葡萄糖、蔗糖、果糖和水苏糖的混合标准溶液。分别测定六个混合标准溶液,Y为峰面积,X为浓度,绘制标准曲线,根据S/N=3计算仪器检出限,结果如表2所示。
取玄参样品5份,分别编号为1、2、3、4、5,按照1.4中样品处理方法对样品进行前处理,按1.2中色谱条件进行测定,样品色谱图如图4所示,横坐标为保留时间(min),纵坐标为峰高(nA)。测定结果如表3所示,由表3可知,不同部位的玄参根中糖的含量有少许差距。
表3 样品测定结果(质量分数%)Table 3 The results of the samples(mass fraction%)
图3 样品色谱图Fig.3 Standards chromatography of sample
同时称取两份样品0.1012g,其中一份加入标准物质,按照1.4样品处理方法对样品进行处理,测得加标回收率如表4所示。
表4 加标回收率Table 4 The results of recovery percentage
实验测得玄参中水苏糖的平均含量为9.37%,含量较高,因此玄参可以作为提取水苏糖的一种原料。水苏糖可以从玄参中被分离纯化,进而制成一种中成药,以提高玄参的药用价值。果糖与水苏糖的分离度不是很好,可能是二者在所选用的阴离子交换柱上具有较强相互作用引起的。
[1]胡瑛瑛,黄真.玄参的化学成分及药理作用研究进展[J].浙江中医药大学学报,2008,32(2):268-270.
[2]胡礼勇,邓军娥,柯伟,等.玄参寡聚糖 SnOS-A的分离纯化、理化性质和结构研究[C].中国药学会学术年会,2004.
[3]梁丽新.功能性低聚糖-水苏糖[J].中国食品添加剂,2004(4):51-54.
[4]Jian Han,Min Ye,Man Xu,et al.Characterization of flavonoids in the traditional Chinese herbal medicine-Huangqin by liquid chromatography coupled with electrospray ionization mass spectrometry[J].Journal of Chromatography B,2007,848:355-362.
[5]DP Elder,D Snodin,ATeasdale.Analytical approaches for the detection of epoxides and hydroperoxides in active pharmaceutical ingredients,drug products and herbals[J].Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis,2010,51:1015-1023.
[6]张嫚丽,霍长虹,刘丽,等.土木香药材HPLC指纹图谱研究及土木香内酯和异土木香内酯测定[J].中草药,2010,41(9):1539-1542.
[7]王宁,武卫红,李中文,等.基于近红外光谱技术对双黄连口服液中黄芩苷、绿原酸和连翘苷进行现场快速定量分析方法的研究[J].药物分析杂志,2009,41(9):1477-1478.
[8]邵力成,尹登科,高向东.天然多糖免疫细胞受体的研究进展[J].药物生物技术,2006,13(5):389-392.
[9]Cristiana Campa,Edi Baiutti,Anna Flamigni.Capillary electrophoresis of sugar acids[J].Methods in Molecular Biology,2008,384:307-355.
[10]Zhang Wei,He Hongbo,Zhang Xudong.Determination of neutral sugars in soil by capillary gas chromatography after derivatization to aldononitrile acetatesSoil[J]. Biology & Biochemistry,2007,39:2665-2669.
[11]Paul B Filson,Benjamin E,Dawson-Andoh.Characterization of sugars from model and enzyme-mediated pulp hydrolyzates using high-performance liquid chromatography coupled to evaporative light scattering detection[J].Bioresource Technology,2009,100:6661-6664.
[12]李仁勇,梁立娜,牟世芬,等.离子色谱-脉冲安培检测白醋和豆腐水中单糖和大豆低聚糖[J].分析化学,2009,37(5):725-728.
[13]汪茂田,谢培山,王忠东,等.天然有机化合物提取分离与结构鉴定[M].北京:化学工业出版社,2004:36-37.
Determination of monosaccharides and oligosaccharides in figwort root by ion chromatography
XIONG Jian-fei1,ZHOU Guang-ming1,HE Qiang2,*,XU Li1,ZHANG Lei1,WU Li-min1
(1.Key Laboratory on Luminescence and Real-Time Analysis(Southwest University),Ministry of Education,School of Chemistry and Chemical Engineering,Southwest University,Chongqing 400715,China;2.Key Laboratory of Three Gorges Reservoir Region’s Eco-Environment,Ministry of Education,Chongqing University,Chongqing 400045,China)
An anion exchange chromatography-pulsed amperometric detection method has been proposed for determination of glucose,sucrose,fructose,stachyose in figwort root.The analytical column was METROSEP CARB 1(150mm×4.0mm).The elution was performed using 30mmol/L sodium hydroxide isocratic elution and the column temperature was 32℃.A ultrasonoscope was used for extracting sugars.The RSD of area ranged from 0.56%to 9.01%,the linear range was 1~50mg/L,the detection limits was 0.0452~0.0921mg/L,the related coefficient(R)was 0.9931~0.9998,and the spike recoveries ranged from 96.52%to 109.56%.The method was simple and had a high sensitivity.So this method can be applied for the determination of monosaccharides and oligosaccharides in figwort root.
anion exchange chromatography;pulsed amperometric detection;isocratic elution;ultrasonoscope;figwort root;monosaccharides;oligosaccharides
TS207.3
A
1002-0306(2012)07-0340-04
2011-06-15 *通讯联系人
熊建飞(1984-),男,硕士研究生,研究方向:离子色谱。
国家科技部重大专项项目(2008ZX07315)。