王利华 张 睿 田 强 陈 燕 张美增 (青岛大学医学院附属医院,山东 青岛 26602)
近年来随着人口老龄化的进展,人的寿命逐渐增加。与此同时,阿尔茨海默病(AD)的发病率也逐年增加。AD是一种进行性神经退行性疾病,以近期记忆障碍为主要临床症状,其特征性病理变化是老年斑、神经原纤维缠结。有研究证实,大脑海马区神经元凋亡和炎症反应可能是AD的发病机制之一〔1〕,目前尚无有效的治疗措施。动物实验研究表明,神经调节素-1β(NRG-1β)能抑制脑缺血诱导的炎症反应和细胞凋亡,具有一定的神经保护作用〔2,3〕。本实验试图利用单侧侧脑室注射β淀粉样蛋白1~40(Aβ1~40)的方法建立拟痴呆大鼠模型,从细胞凋亡和炎症反应角度探讨NRG-1β治疗AD的机制。
1.1 动物来源 健康成年雄性Wistar大鼠40只,体重200~220 g,由青岛市药检所实验动物中心提供〔SCXK(鲁)20070010〕。实验前,将动物置于实验室适应环境1 w,自由进食、饮水;室温(23±2)℃,自然光照。
1.2 学习记忆能力训练〔4〕应用Ⅰ-Ⅱ-Ⅲ三等臂式Y型电迷宫作为刺激器。首先将大鼠放入迷宫的Ⅰ臂,适应3 min后进行刺激(电压60 V,电流0.5~0.7 mA,持续2 s)。其余两臂中的任一臂灯光亮信号示为安全区。如果大鼠进入安全区为正确反应,否则为错误反应。第2步训练以此安全区作为起步区,并使大鼠在安全区停留1 min巩固记忆,再次给予电刺激,以此类推,按方向(Ⅰ→Ⅱ→Ⅲ→Ⅰ)依次改变安全区位置。学习测试:按上述方法每天固时间定训练10次,连续7 d,以测试达到连续10次中有9次(9/10)正确反应前所需的电击次数,即尝试次数表示学习能力。淘汰反应过于迟钝大鼠。记忆再现测试:学习测试完成24 h后以同样方法进行,以达到9/10标准。正确反应次数定为A,以A/10表示记忆的保持的能力,此值越高说明记忆力越好。
1.3 动物模型制备〔5,6〕将 Aβ1~40(Sigma公司)用 0.1 mol/L PBS稀释成2 g/L,37℃孵育72 h,变为聚集状态。从上述40只大鼠中筛选具有学习和记忆能力的30只,随机分为对照组、模型组和治疗组各10只。用10%水合氯醛腹腔注射麻醉(3 ml/kg体重),固定于脑立体定位仪(江湾ⅠC),颅顶正中线切开皮肤,用骨钻钻孔,以微量注射器垂直进针,向左侧脑室(定位坐标AP=0.8 mm,ML=1.1 mm,DV=3.6 mm)缓慢注入凝聚态 Aβ1~405 μl,1 μl/min,5 min 内注射完毕,留针 5 min,以保证Aβ1~40充分弥散,缓慢退针,牙科水泥封固,缝合切口。对照组同步注射等体积0.1 mol/L PBS。
1.4 干预措施 将基因重组NRG-1β(R& D Systems,Inc)应用0.1 mol/L PBS溶解稀释成1 g/L的溶液。造模成功后7 d,用Y型电迷宫测试动物的学习记忆能力。然后,治疗组按照5 μg/kg剂量,经右侧侧脑室注射 NRG-1β 5 μl。对照组和模型组同步注射等体积0.1 mol/L PBS。对照组、模型组及治疗组最终入组动物分别为8、7、7只。
1.5 评价指标
1.5.1 记忆再现测试 治疗后7 d,用Y型电迷宫测定大鼠的学习记忆功能。
1.5.2 标本采集 行为测试后,10%水合氯醛麻醉动物,4%多聚甲醛溶液经心脏灌注固定,断头完整取脑,常规乙醇脱水、二甲苯透明、石蜡包埋。自视交叉后方连续冠状位切片(厚5 μm),贴于多聚赖氨酸处理的载玻片上,4℃保存备用。
1.5.3 细胞凋亡 切片常规脱蜡水化,按照TUNEL凋亡检测试剂盒(武汉博士德生物工程公司)操作,光镜下观察,胞核有棕色颗粒者为阳性细胞。部分切片不加探针,用0.1 mol/L PBS代替,不出现阳性反应。每只大鼠取4张连续切片,每张切片计数4个高倍视野中的阳性细胞数,取其均值。
1.5.4 免疫组化 兔抗鼠TNF-α抗体、SABC试剂盒、DAB染液购于武汉博士德生物工程公司。按试剂盒说明书操作,DAB显色,光镜下胞浆有棕色颗粒者为阳性细胞。部分切片不加一抗,用0.1 mol/L PBS代替,不出现阳性反应。每只大鼠取4张切片,高倍镜下海马区随机取4个视野,LEICA Qwin图像处理系统分析各视野吸光度值(A),减去背景A值,取其相对值(⊿A)。
2.1 大鼠学习记忆能力 模型成功后大鼠尝试次数较造模前显著性增多(P<0.05),即出现学习和记忆能力下降;但对照组前后无显著性差异(P>0.05)。NRG-1β治疗7 d后,治疗组动物尝试次数较模型组显著少(P<0.05),提示治疗组学习和记忆成绩优于模型组,但尝试次数仍显著高于对照组(P<0.05)。
2.2 细胞凋亡 对照组、模型组和治疗组动物海马区均可见数量不等的凋亡神经细胞,其中模型组和治疗组凋亡细胞数量均显著显著高于对照组(P<0.05),治疗组显著低于模型组(P<0.05)、但仍高于对照组(P<0.05)。见表1。
表1 各组大鼠海马区细胞凋亡和TNF-α表达(±s)
表1 各组大鼠海马区细胞凋亡和TNF-α表达(±s)
与对照组比较:1)P<0.05;与模型组比较:2)P<0.05
组别 n 细胞凋亡 TNF-α(⊿A)5.3±2.12 0.18±0.06模型组 7 22.4±4.371) 0.46±0.121)治疗组 7 13.6±3.621)2) 0.31±0.181)2)对照组8
2.3 TNF-α表达 TNF-α表达相对吸光度值(⊿A)在各组大鼠之间有显著性差异(P<0.05)。组间比较显示,模型组TNF-α表达⊿A值显著高于对照组(P<0.05),治疗组⊿A值显著低于模型组(P<0.05)、但仍高于对照组(P<0.05)。见表1。
近年有研究表明〔7〕,Aβ是炎性反应的启动因素,Aβ可激活胶质细胞,产生炎症介质,引起神经毒作用。Bamberger等〔8〕发现,小胶质细胞膜上的受体复合物与沉积在神经元周围的Aβ相互作用,使小胶质细胞活化、增殖,并过量分泌促炎因子,介导炎症损伤。炎性因子通过Toll样受体4和核转录因子κB(TLR4-NFκB)信号传导途径引起 NF-κB 激活,促进诸如 TNF-α等靶基因激活,最终诱导神经细胞凋亡〔9〕。星型胶质细胞、小胶质细胞、内皮细胞被缺血激活后产生炎性因子,与细胞膜受体TLR4结合,引起一系列氧化磷酸化过程,激活细胞内NF-κB表达,活化的NF-κB进入细胞核促进TNF-α等炎性因子的mRNA转录,继而上调其他相关炎性因子的表达,进一步加重炎症反应,损伤神经细胞〔10〕。Li等〔2,3〕研究表明,NRG-1β 能抑制脑缺血诱导的信号转换和转录激活因子3(STAT3)炎症反应和凋亡,缩小脑梗死体积,改善动物的行为功能,提示NRG-1β能有效地抑制炎症反应而发挥神经保护作用。?
1 Shimohama S.Apoptosis in Alzheimer′s disease-an update〔 J〕.Apoptosis,2000;5(1):9-16.
2 Li Q,Li Z,Mei YW,et al.Neuregulin attenuated cerebral ischemia-reperfusion injury via inhibiting apoptosis and upregulating aquaporin-4〔J〕.Neurosci Lett,2008;443(3):155-9.
3 李 琴,秦丽华,栾丽菊,等.神经调节素对大鼠脑缺血再灌注损伤细胞凋亡和STAT3和GFAP表达的影响〔J〕.解剖学报,2008;39(6):820-5.
4 王跃春.Y型电迷宫在大鼠学习记忆功能测试中的合理运用〔J〕.中国行为医学科学杂志,2005;14(1):69-70.
5 Nabeshima T.Trial to produce animal model of Alzheimer′s disease by continuous infusion of beta-amyloid protein into the rat cerebral ventricle〔J〕.Nihon Shinkei Seishin Yakurigaku Zasshi,1995;15(5):411-8.
6 楚 晋,李 林.脑室灌注β-淀粉样肽致痴呆动物模型〔J〕.中国药理学通报,2004;20(7):827-36.
7 王子红,文 彬,潘国际,等.治疗阿尔茨海默病药物的研究进展〔J〕. 中国临床康复,2002;6(19):2938-9.
8 Bamberger ME,Harris ME,Mc Donald DR,et al.A cell surface receptor complex for fibrillar beta-amyloid mediates microglial activation〔J〕.J Neurosci,2003;23(7):2665-74.
9 Bi X,Yan B,Fang S.Quetiapine regulates neurogenesis in ischemic mice by inhibiting NF-kappaB p65/p50 expression〔J〕.Neurol Res,2009;31(2):159-66.
10 Boersma MC,Meffert MK.Novel roles for the NF-κB signaling pathway in regulating neuronal function〔J〕.Sci Signal,2008;1(6):pe7.