刘素蕊,赵春生,王更银,李振奇,李俊峡
(解放军白求恩国际和平医院,石家庄 050082)
心肌梗死是心血管病死亡的重要原因之一,严重危害着人类健康,其在发展中国家的发病率和死亡率居高不下[1]。心肌梗死特征是心肌细胞坏死并被纤维组织所取代从而影响整个心脏功能和患者预后[2]。伴随对心肌梗死研究的不断深入,如何建立更贴近临床的动物模型成为关键之一。心肌梗死模型作为疾病研究的重要手段,其应用不但可以研究心肌梗死的发病机制,而且能够为心肌梗死的预防和新治疗方案的建立提供理论及实验依据。本实验比较了两种不同的构建犬心梗模型的方法,以期为更好地制备模型提供理论依据。
1.1 材料
杂种犬16只,开胸冠脉结扎与闭胸冠脉栓塞各8只,雌雄不拘,体重(15~20)kg;小型动物呼吸机(成都泰盟科技有限公司);PTCA所需材料包括各种穿刺针、动脉鞘、导丝(短导丝及长导丝)、导管(造影导管、Guiding造影导管、PTCA球囊导管均为Cordis公司产品);数字剪影血管造影机(荷兰飞利浦)。
1.2 实验方法
1.2.1 麻醉犬:术前12 h禁食,6 h禁水,经肌内注射速眠新(846合剂,0.15~0.20 m L/kg体重)进行麻醉,胸部及双侧腹股沟部备皮,建立静脉通道,进行心电监测。术中根据肢体运动情况每隔1 h左右重复肌内注射速眠新1.5 m L,使犬保持麻醉状态,并观察犬的呼吸、血压、心律及心率情况。
1.2.2 开胸冠脉结扎方法制备犬心梗模型:将犬固定于实验手术台上,右侧卧位,气管插管,接呼吸机辅助呼吸,静脉预防性使用抗生素。常规消毒铺巾,左前胸心脏搏动最明显之肋间(约4~5肋间)作横切口,约5~7 cm,逐层分离,暴露心脏,表面最粗大的横向走行的血管即为左前降支(LAD)。先结扎供应预缺血区大的侧支血管,左前降支第一对角支下距左主干1.5 cm处结扎前降支主干,观察3~5 m in。术中有心律失常者用利多卡因5~10 mg/kg静注,关闭胸腔,逐层缝合肌肉,用青霉素粉剂敷于肌肉和皮肤内层防止感染,并插引流管进行肺部排气。关胸后用50 m L注射器抽尽胸腔内积气,避免术后气胸。待犬自主呼吸恢复去掉呼吸机,拔出引流管,保温至完全苏醒。
1.2.3 闭胸冠脉栓塞制备犬心梗模型:常规手术消毒铺巾,经皮穿刺右股动脉,穿刺成功后,置入5F血管鞘。此时经股动脉注入肝素钠2500 U,此后每隔1 h追加肝素钠1250 U。插入Cobra造影导管,在透视监视下置入冠状窦,插入左冠状动脉主干行冠状动脉造影,造影成功后将导丝送入前降支远端,沿钢丝送入微导管,撤除钢丝保留微导管于前降支中段,经微导管注入细颗粒状明胶海绵(注入前无菌状态下用手术刀将其切割成直径1 mm左右的细颗粒状),行冠状动脉造影显示左前降支远端血流中断,拔除造影导管。拔除血管鞘,动物清醒后送回动物饲养中心。
1.2.4 犬心梗模型鉴定:(1)心电图检查:造模前及30 min后采用单级肢体导联和胸导联方式,观察心电图波形变化;(2)病理分析:两组动物均于术后72 h,静脉注射10%KCl 20 mL将犬处死,迅速取出心脏,用生理盐水将残余血液冲洗干净,置入10%福尔马林固定液中,固定后行组织修整、洗涤、酒精逐级脱水,二甲苯置换出组织中的酒精。石蜡包埋,切片机切成4μm的薄片,HE染色封片,光镜观察。
2.1 开胸冠脉结扎法
5 m in后可观察到结扎部位变苍白。本组4只犬死亡(死因分别为气胸和麻醉过深),4只存活;闭胸冠脉栓塞法,1只死亡,7只存活。开胸对实验动物的创伤较大,故死亡率较高。
2.2 犬心梗模型的鉴定
开胸冠脉结扎过程中,结扎左前降支3~5 m in后可见结扎部位以下及心尖部心肌颜色变暗,搏动减弱(图1);闭胸冠脉栓塞注入明胶海绵后造影显示左前降支远端血流中断(图2)。(1)较造模前正常心电图波形,两种方法造模后的心电图均显示ST-T改变和/或室性心律失常出现,符合心梗心电图特点(图3);(2)造模后72 h KCl处死实验犬,造模前正常心肌样本为砖红色,梗死心肌颜色暗淡,呈白色或灰色;梗死部位主要位于左心室前壁。光镜下梗死心肌细胞变性深染,核固缩、消失,肌纤维肿胀,间质血浆渗出、出血,并可见大量白细胞浸润(图4,B、C,图4见封三)。心电图和病理结果提示两种方法均可成功制作心梗模型。
图1 开胸冠脉结扎左前降支。Fig.1 The left anterior descending coronary artery was obstructed by open thoracotomy ligation
图2 造影显示闭胸冠脉栓塞过程。A,冠脉造影栓塞前;B,栓塞组显影。Fig.2 Coronary angiography showing the close chest embolism.A.Before embolism;B.After embolism
心肌梗死模型的制备原理是采用各种手段使目的冠状动脉闭塞,从而造成该冠脉供血区的心肌细胞发生缺血坏死。心肌缺血使心肌细胞数目减少,心肌收缩力下降[3],从而为心肌梗死的研究提供条件。考虑到犬个体较大,观察与操作方便,且犬在心脏解剖、生理特性方面与人类也较为接近,相关研究较少,所以选择犬作为实验模型。
当前,冠脉结扎法和介入法是两种最常用的制备心梗模型的方法。有研究报道,结扎左冠脉前降支及冠脉介入均能够成功建立心梗模型[4,5]。本实验我们以犬为模型对这两种造模方法进行比较,发现这两种方法均能成功制备犬的急性心肌梗死模型,且可被心电图和病理检测所证实,同已有实验结论一致。其中开胸结扎法手术操作难度高,创伤大,易造成气胸,且必须有呼吸机辅助呼吸,术后恢复较慢,难以饲养且死亡率高。该组的8只动物中,死亡4例,死亡率高达50%,我们总结手术过程中的经验和教训如下:(1)良好的麻醉至关重要。戊巴比妥钠是文献中最常报道的全麻药物,但其对呼吸的抑制较重,如不能良好掌握输注速度及剂量,易致动物麻醉过量而死亡。我们所选用的麻醉药物速眠新(846合剂),对呼吸的抑制程度较轻,以(0.15~0.20)m L/kg肌内注射,可以达到理想的麻醉效果;(2)气胸是导致犬死亡的重要原因。因犬的纵膈胸膜极薄,在打开心包膜时易被撕破而形成右侧气胸。此外,因犬无法使用胸腔闭式引流,所以术后关胸时要尽量抽尽胸腔内气体,术后发现气胸要及时抽气;(3)呼吸机必不可少。在以开胸结扎法制备心梗模型的过程中,呼吸机的应用可大大提高动物的存活率,简易人工呼吸气囊不容易掌握潮气量的大小和频率,死亡率很高;(4)室颤的预防及处理。室颤的发生率与冠脉结扎的位置和心梗的面积密切相关[6],因此,掌握好结扎部位是预防室颤及造模成功的关键。结扎前的缺血预适应对预防室颤的发生也很重要,一般采用先结扎较大的侧支血管,再结扎前降支主干的方法,即可以达到很好的室颤预防效果。此外,预防性应用利多卡因,可以提高室颤的阈值,从而减少室颤的发生。一旦出现室颤,应立即给予除颤器电击除颤,犬的侧支循环比较丰富,一般均可复律。相比之下,介入法制备过程比较顺利,除一例因微导管进的位置太深导致室颤死亡外,其余几例均成功存活,在制备过程中应注意:(1)导管不宜在冠状动脉内停留时间太久,微导管位置不宜进的太深,否则均易诱发室颤,增加死亡率;(2)栓塞前降支位置不宜过高,以第2对角支远端最为合适[7],高位阻断后,梗死面积过大,术后易并发急性左心衰而致动物死亡,死亡率可高达85%[8]。
图3 两种方法造模前后的心电图波形变前化。A,正常犬的心电图波形; B,开胸冠脉结扎组心电图;C,闭胸冠脉栓塞组心电图。Fig.3 Electrocardiograms of the dogs before and after the model establishment.A.Electrocardiogram before the model establishment;B.Coronary ligation group;C,Close chest embolism group
本实验所采用的两种造模方法均可成功制备犬的急性心肌梗死模型,并为心电图、病理组织切片的方法所证实。其中,开胸结扎法效果确实可靠,但操作难度高,创伤大,动物不容易存活;而介入法简便易行,创伤小,死亡率低,结果同已有报道一致,是一种有效的犬急性心肌梗死造模方法。
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